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微生物及液體S本中甲醛脫氫酶盒 微量法
產品簡介:

儲存條件
2-8℃
有效期
6個月
單位

推薦
若使用96孔板測定,需使用96孔UV板,推薦貨號YA0602
英文名稱
Formaldehyde Dehydrogenase (FDH) Activity Assay kit (Microbiological and Liquid Samples)
檢測方法
微量法
微生物及液體S本中甲醛脫氫酶盒 微量法

產品型號:BC4995-100T/96S

更新時間:2024-07-07

廠商性質:生產廠家

訪 問 量 :746

服務熱線

010-50973130

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產品介紹

微生物及液體樣本中甲醛脫氫酶(FDH)活性檢測試劑盒說明書

微量法

貨號:BC4995

規(guī)格:100T/96S

產品內容:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體110 mL×1

2-8℃保存

試劑一

液體15mL×1

2-8℃保存

試劑二

粉劑×2

-20℃保存

試劑三

粉劑×2

2-8℃保存

試劑四

液體2 mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 試劑二:臨用前1加入0.25 mL蒸餾水,震蕩使其充分溶解1瓶粉劑溶解后可做100T,為了延長使用時間,此產品多給1瓶粉劑),可分裝后-20℃保存2周,避免反復凍融

2、 試劑二工工作液:臨用前按試劑二:蒸餾水=1:29體積比例稀釋試劑二,現用現配。

3、 試劑三:臨用前取1加入0.6 mL蒸餾水,震蕩使其充分溶解。用不完的試劑2-8℃分裝保存2周。

產品說明

甲醛脫氫酶存在于絕大多數原核生物以及所有的真核生物中,是一種將甲醛進行轉換的氧化還原酶。甲醛脫氫酶催化甲醛和 NAD+產生 NADH,在 340nm 處的吸光值會增加,測定 340nm處的吸光值變化,可計算得到甲醛脫氫酶的活性。

注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品:

紫外分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96UV板、低溫離心機、恒溫水浴鍋/培養(yǎng)箱、可調式移液槍、超聲波細胞破碎儀、蒸餾水。

操作步驟

一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)

細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;按照每500萬細菌或細胞加入1 mL提取液,超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3s,間隔9s,總時間 3 min);然后8000 g,4℃,離心10 min,取上清(若上清不夠澄清,建議重復上述離心步驟),置于冰上待測。

血清及液體樣本:直接檢測。

二、測定步驟

1、 紫外分光光度計/酶標儀預熱30 min以上,調節(jié)波長至340 nm,分光光度計蒸餾水調零。

2、 臨用前將試劑置于37℃預熱10 min

3、 在微量石英比色皿或96UV板中依次加入 20 μL 樣本、110 μL試劑一、50 μL試劑二工作液、10 μL試劑三、10 μL試劑四,充分混勻后于340nm處測定20s時的吸光值A1,迅速置于37℃水浴或培養(yǎng)箱5min(酶標儀有控溫功能可將溫度調至37℃),拿出迅速擦干測定5min20s時的吸光值A2。計算ΔA=A2-A1

 

三、酶活性計算

A、按微量石英比色皿計算

1、細菌或培養(yǎng)細胞中FDH活力的計算

1)按細菌或細胞數量計算:

單位的定義:每104個細菌或細胞每分鐘催化1 nmol NAD+生成1 nmol NADH定義為一個酶活力單位。

FDH活(U/104 cell=ΔA÷ε×d×V反總×109÷V÷V樣總×N÷T×F =321.54×ΔA÷N×F

2)按蛋白濃度計算:

單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化1 nmol NAD+生成1 nmol NADH定義為一個酶活力單位。

FDH活(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V反總×109÷V×Cpr÷T×F=321.54×ΔA÷Cpr×F

2、血清(漿)或液體樣本FDH活力的計算

1)按液體體積計算:

單位的定義:每mL液體樣本中每分鐘催化1 nmol NAD+生成1 nmol NADH定義為一個酶活力單位。

FDHU/mL=ΔA÷ε×d×V反總×109÷V÷T×F =321.54×ΔA×F

2)按蛋白濃度計算:

單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化生成1 nmol NAD+生成1 nmol NADH定義為一個酶活力單位。

FDH活(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V反總×109÷V×Cpr÷T×F=321.54×ΔA÷Cpr×F

eNADH 摩爾消光系數,6220 L/ mol/cm;d石英比色皿光徑,1cm;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;V反總:酶促反應總體積,2×10-4L;V樣總:加入提取液體積,1 mLV樣:加入樣本體積,0.02 mL;T:反應時間,5 min;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;N:細胞或細菌總數,以萬計;F:稀釋倍數;109:單位換算系數,1mol=109 nmol。

B、按96UV板計算

將上述公式中d=1cm變?yōu)?/span>d=0.6cm,代入公式進行計算即可。

注意事項:

1、如果測定吸光值A1.5ΔA0.5,建議稀釋樣本后再測定,計算公式中乘以稀釋倍數;如果測定吸光值較低,建議增加樣本量后再進行測定。

2、試劑四有毒性,實驗時請佩戴口罩手套等防護措施。

實驗實例:

1、 0.1g大腸桿菌沉淀加入1 mL提取液,超聲波破碎細胞(功率300W,超聲3s,間隔9s,總時間 3min);然后8000 g4℃,離心10 min,取上清按照測定步驟操作,用微量石英比色皿測得計算ΔA=A2-A1=0.2523-0.0396=0.2127,按細菌數量計算酶活得:

FDH活(U/104 cell= 321.54×ΔA÷N =683.9 U/g。

2、 0.02 mL牛血清按照測定步驟操作,用微量石英比色皿測得計算ΔA =A2 -A1 =0.1101-0.0772=0.0329,按液體體積計算酶活得:

FDH活(U/mL=321.54×ΔA=10.579 U/mL

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